محیط کشت آدیپوپلاس AdipoPlus ایده زیست نوترکیب

محیط آدیپوپلاس ایده زیست یک محیط آماده به مصرف است که برای تمایز آدپیوژنز سلول های بنیادی مزانشیمی (MSC) بخصوص سلول های بنیادی مزانشیمی انسان در سیستم in vitro تولید شده است. پس از حدود 3 هفته  سلول های تمایز یافته را می توان برای سنتز لیپید با رنگ آمیزی Oil-Red-O بررسی کرد. آدیپوپلاس یک ابزار تحقیقاتی بسیار خوب برای مطالعه اختلالات آديپوسیت، آديپوژنز، و بيماریهای متابوليک مرتبط با آديپوسیت است. این محيط حاوی تمام معرف های لازم برای القاء مسیرهای آديپوژنز در سلول های بنیادی مزانشیمی برای توليد آديپوسيت ها می باشد.

محیط کشت آدیپوپلاس چیست؟

محیط کشت آدیپوپلاس (AdipoPlus) ایده زیست نوترکیب برای تمایز سلول های بنیادی مزانشیمی انسانی به سلول های چربی (آدیپوسیت) بکار می­رود. اجزای ضروری فرایند القا آدیپوژنز در فرمولاسیونی شامل دگزامتازون، 3-ایزوبوتیل-1 متیل زانتین، و انسولین در محیط DMEM-Low Glucose  حاوی سرم جنین گاوی بهینه شده است.  توصیه می شود این محیط کشت تنها برای تمایز سلول های انسانی استفاده شود؛ درغیر اینصورت ممکن است نتایج نامناسبی بدست آید…

مشخصات مهم محیط آدیپوپلاس ایده زیست 

• آدیپوپلاس در 2 تا 8 درجه سانتیگراد تا یک ماه پایدار است. برای تگهداری درازمدت، باید محیط را در مقادیر کم الیکوت و فریز کنید. با این حال، فریز کردن، درصد تمایز را کاهش می دهد.
• محیط را فریز و ذوب مجدد نکنید.
• این محیط حاوی گلوتامکس است.
• رنگ محیط باید قرمز شفاف باشد. در صورت تغییر رنگ، از آن استفاده نکنید.

پاساژ دادن و آماده سازی سلول های بنیادی مزانشیمی

 تک لایه سلولی از کشت های پایه که در محیط کشت استاندارد گسترش یافته را بررسی و مشاهده کنید تا از کانفلونسی فاز رشدmid-log  (80-60 درصد) مطمئن شوید (توصیه می شود از محیط DMEM با شماره کاتالوگ BI-1004 که دارای مکمل FBS 10% با شماره کاتالوگ BI-1201 است استفاده شود). محیط و سلول های شناور را از فلاسک کشت برداشته و دور بریزید. اجازه ندهید که سلول های بنیادی مزانشیمی پاساژ داده شده به طور کامل کانفلوانت شوند، زیرا می تواند قابلیت مولتی پتانسیل آنها را کاهش دهد.

نحوه عملکرد

• به میزان 10-5 میلی لیتر PBS فاقد فسفر و منیزیم با شماره کاتالوگBI-1401 اضافه کنید. تک لایه سلولی را به آرامی شستشو دهید.
• سپس PBS فاقد فسفر و منیزیم را بردارید، به مقدار کافی از تریپسین پیش گرم شده (BI-1603 یا BI-1604) را به فلاسک اضافه کنید و بطور کامل سطح کشت را پوشش دهید. به مدت 5 تا 8 دقيقه يا تا زماني كه سلول ها به طور كامل جدا شوند در 36 تا 38 درجه سانتيگراد انكوبه كنید. استفاده بیش از حد از تريپسين منجر به کاهش بقا و توسعه سلول های بنیادی مزانشیمی می شود.
• سلول های جدا شده را به آرامی به داخل یک محلول سلولی تکی پیپت کنید و با میکروسکوپ معکوس بررسی و تایید کنید.
• سوسپانسیون سلولی را از فلاسک خارج و به یک لوله سانتریفوژ منتقل کنید.
• سلول ها را در g 100 به مدت 5 تا 10 دقیقه سانتریفوژ کرده و رسوب بدهید.
• میزان حیات و نیز تراکم کلی سلول ها را با استفاده از رنگ آمیزی تریپان بلو (BI-1803) تعیین کنید.
• دوباره رسوب را در یک حجم مناسب از محیط رشد سلول های بنیادی مزانشیمی که از قبل گرم شده است حل کنید (DMEM + 10% FBS توصیه می شود).
• سلول ها را در محيط رشد سلول های بنیادی مزانشیمی در 36 تا 38 درجه سانتي گراد در مجاورت رطوبت و 6-4 درصد CO2 براي حداقل 2 ساعت تا حداکثر 4روز انکوبه کنید. پلیت ها را در پاساژ فلاسک T25 با تعداد تقریبا 1 x 10⁴ سلول در سانتی متر مربع برای سلول های با پاساژ کم یا 2 x 10⁴ سلول در سانتی متر مربع در مورد سلول های با پاساژ زیاد، در محیط رشد استاندارد تلقیح کنید (DMEM + 10% FBS توصیه می شود). سلول های بنیادی مزانشیمی که بطور مستمر پاساژ داده شده اند، بعد از پاساژ 10، بتدریج توانایی مالتی پتانسیل خود را از دست خواهد داد.

یکی از مقادیر و پلیت های زیر را استفاده کنید:

• 2 میلی لیتر محیط رشد در هر چاهک برای پلیت های 2 چاهک، یا
• 1 میلی لیتر در هر چاهک برای پلیت های 12 چاهک، یا
• 5/0 میلی لیتر در هر چاهک برای پلیت های 24 چاهک، یا
• 200 میکرولیتر برای پلیت های 48 چاهک.

نکته: برای آزمون اسپکتروفتومتری، سه چاهک را برای بلانک خالی بگذارید و سه چاهک از هر سویه ASC باید در محیط غیرالقا شده تست شود.

تمایز آدیپوژنز

1. هر روز سلول ها را بررسی کنید تا از وجود کانفلونسی فاز رشد mid-log (80-60 درصد) مطمئن شوید.  یا فقط با هم ادغام شوند، کل محیط کشت را برداشته و چاهک های تکرار شده را با محیط آدیپوپلاس (BI-1101) از پیش گرم شده و با محیط کنترل جایگزین کرده و انکوباسیون را ادامه دهید. سلول های بنیادی مزانشیمی همچنانکه در شرایط آدیپوژنیک تمایز می یابند به گسترش محدود خود ادامه می دهند،. هر 3 تا 4روز، کشت ها را دوباره غنی کنید. گسترش سلول های بنیادی مزانشیمی در محیط رشد برای 4-2 روز قبل از غنی کردن مجدد محیط آدیپوپلاس، می تواند فرایند آدیپوژنز را افزایش دهد.

2. پس از دوره های اختصاصی کشت، کشت های آدیپوژنیک را می توان با رنگOil Red O (BI-1802) پروسس کرد، از 14-7روز، آنالیز بیان ژن، یا تشخیص پروتئین استفاده کرد.

توجه: برخی از سویه های سلولی ممکن است به رشد خود ادامه دهند و در این شرایط به تراکم بیش از حد (نقطه ای که تک لایه سلولی کلامپ یا کنده شود) برسند.

توجه: برخی از کشت ها نسبت به سایرین، با سرعت کمتری چربی انباشته می کنند. اگر به نظر می رسد کشت تمایز یافته است اما پس از 2 هفته هنوز وزیکول های چربی در محیط آدیپوپلاس کوچک هستند، کشت را باید با محیط تازه آدیپوپلاس غنی کرده و برای 4 روز دیگر به انکوباسیون را ادامه داد (در کل 21 روز در شرایط آدیپوژنیک). پس از 6 روز انکوباسیون با محیط تمایزی، قطرات چربی قابل رویت خواهد بود.

3. سلول ها را یکبار با PBS فاقد کلسیم منیزیم سرد شستشو دهید. اگر از اسلایدهای کشت 2 چاهکی استفاده می شود، محیط را خارج کنید و 2 میلی لیتر PBS فاقد کلسیم منیزیم سرد برای هر چاهک، یا 1 میلی لیتر برای هر پلیت های 12 چاهکی و 24 چاهکی اضافه کنید (از این حجم ها در تمام مراحل زیر استفاده کنید).
4. محلول شستشو را بردارید و محلول فرمالدهید/کلسیم را برای حداقل10 دقیقه در دمای اتاق، یا حداکثر 24 ساعت در دمای 4 درجه سانتی گراد اضافه کنید. اگر رنگ آمیزی Oil-Red-O تا این زمان انجام نشده است، فیکساتیو را بردارید، با PBS سرد جایگزین کرده و در دمای 4 درجه سانتی گراد برای حداکثر یک هفته نگهداری کنید تا آماده رنگ آمیزی بماند.

ارجاعات

1. Alizadeh, Effat, et al. “Upregulation of MiR‐122 via trichostatin a treatments in hepatocyte‐like cells derived from mesenchymal stem cells.” Chemical biology & drug design2 (2016): 296-305.
2. Abolhassani, S., K. Yavari, and J. Mohammadnejad. “Investigation of Isolating of Human Mesenchymal Stem Cells from Umbilical Cord Blood and Labeling them with 99m Technetium.” Int J Stem Cell Res Transplant6 (2016): 190-194.
3. Jalilzadeh-Tabrizi, Sepideh, et al. “A Biomimetic Emu Oil-Blended Electrospun Nanofibrous Mat for Maintaining Stemness of Adipose Tissue-Derived Stem Cells.” Biopreservation and biobanking2 (2018): 66-76.
4. Fayazi, Mehri, Mojdeh Salehnia, and Saeideh Ziaei. “Differentiation of human CD146-positive endometrial stem cells to adipogenic-, osteogenic-, neural progenitor-, and glial-like cells.” In Vitro Cellular & Developmental Biology-Animal 51.4 (2015): 408-414.
5. Davoodian, Nahid, et al. “MicroRNA‐122 overexpression promotes hepatic differentiation of human adipose tissue‐derived stem cells.” Journal of cellular biochemistry 115.9 (2014): 1582-1593.
6. Alizadeh, Effat, et al. “The effect of dimethyl sulfoxide on hepatic differentiation of mesenchymal stem cells.” Artificial cells, nanomedicine, and biotechnology1 (2016): 157-164.
7. Dayer, Dian, et al. “Sonic hedgehog pathway suppression and reactivation accelerates differentiation of rat adipose-derived mesenchymal stromal cells toward insulin-producing cells.” Cytotherapy 19.8 (2017): 937-946.
8. Taghikani, Mohammad, and Fatemeh Eskandari. “Differentiation of Human MSCs Into Nsulin Producing Cells by Using Lentiviral Vector Carrying PDX-1.”

کاتالوگ

1. دریافت کاتالوگ محیط کشت آدیپوپلاس (AdipoPlus) ایده زیست نوترکیب (فارسی)
2. دریافت کاتالوگ محیط کشت آدیپوپلاس (AdipoPlus) ایده زیست نوترکیب (انگلیسی)